免疫熒光技術是將免疫學方法(抗原抗體特異結合)與熒光標記技術結合起來研究特異蛋白抗原在細胞內(nèi)分布的方法。由于熒光素所發(fā)的熒光可在熒光顯微鏡下檢出，從而可對抗原進行細胞定位。免疫熒光技術的主要特點是：特異性強、敏感性高、速度快。但其技術程序比較復雜。今天的技術文章中上海恒遠將為大家分享一些免疫熒光技術中的小妙招，幫助您獲得更好的實驗結果。
1、細胞固定和通透
為達到*佳的檢測效果，細胞需要經(jīng)過固定和通透。這些步驟非常關鍵，細胞和抗原需要保證*佳的結構，并利于抗體與抗原結合。通常情況下，需要通過以下步驟得以實現(xiàn)：細胞用2%-4%多聚甲醛固定，之后用0.1%皂角苷或0.02%的Triton X-100進行通透。前者是比較溫柔的處理，但是對于核內(nèi)抗原可能無效，需要用到Triton。使用皂角苷進行通透時，要注意它會引起細胞膜的可逆性通透，也就是除了在通透初期，在每個抗體孵育環(huán)節(jié)都需要進行通透。另外，細胞可以用冰甲醇進行同時固定和通透，可以避免去垢劑的使用。
2、抗體特異性
免疫熒光需要用到特異性非常強的抗體，可以避免高背景和不理想的蛋白定位結果。在大多數(shù)情況下，純化抗體的效果很好，但是正確的對照可以幫助精準定位抗原。使用只有二抗染色的片子作為陰性對照，有利于減少降低背景干擾。
3、合適的抗體稀釋比例
通過優(yōu)化抗體稀釋比例來優(yōu)化染色，通常情況下1ug/ml的純化抗體或者1:100-1:1000的抗血清足夠達到特異性染色的結果。但在能保證低背景染色的前提下，可以通過增加濃度來提高信號強度。如果是次使用該抗體或測定某抗原，強烈建議濃度梯度實驗。
4、優(yōu)化緩沖液和封閉劑
盡管很多抗原在常見的Buffer如PBS中可以很好的被染色，但是對于某些目的抗原，更換一下含有不同離子的緩沖液，比如鈣、鎂、鉀等，可以帶來很大程度上的改善。Rockland可提供優(yōu)化過的IHC用封閉緩沖液，同樣適用于熒光染色實驗。
5、選擇正確的二抗
如果您需要做免疫實驗，我們強烈建議您選擇進行過預吸附的二抗進行單染實驗；如果是雙重甚至是多重染色，那么必須使用預吸附的二抗。同時，請優(yōu)先選擇來自同一物種的二抗。
6、使用合適的細胞密度
選擇合適的細胞數(shù)量進行染色，當細胞數(shù)量過多時，細胞結構不好，導致染色背景深，低細胞密度，會使細胞貼壁不佳，狀態(tài)不好。
7、多重染色
對同一樣本進行兩個不同抗原的檢測時，可以用各自的抗體進行同時染色，但要求兩個一抗的種屬來源不同，標記物不同，而二抗的種屬來源需保持一致。
8、降低背景
高背景是免疫熒光常見的問題，解決此問題可以用二抗來源的正常血清代替BSA做封閉液，降低抗體濃度，增加洗滌次數(shù)，洗滌至少三次，每次五分鐘，推薦洗滌液為PBS+0.05%Tween。
9、封片
作為免疫熒光的*后一步，可以提高折射率，保護樣品。
10、數(shù)據(jù)分析
觀察整體樣片時，選擇具有代表性的細胞進行數(shù)據(jù)獲取與分析。
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